bioREACTOR 8

Control de temperatura
La temperatura del bloque biorreactor se registra mediante un sensor Pt100 interno y puede controlarse externamente mediante un termostato. Para minimizar las pérdidas por evaporación, el espacio de cabeza de los recipientes de reacción también puede enfriarse con un condensador de reflujo. El agua evaporada se condensa y permanece así en el recipiente de cultivo. El bioREACTOR con tecnología de optosensores puede funcionar entre 10°C y 50°C. Se pueden alcanzar temperaturas de 0°C a 65°C sin necesidad de utilizar sensores.

Volumen de trabajo
El volumen de trabajo de los recipientes de cultivo oscila entre 8 y 15 mililitros. Esto permite la toma múltiple de muestras sin minimizar en gran medida el volumen de fermentación, pero también suficiente capacidad para la adición de agentes correctores del pH o sustratos.

Medición en tiempo real del pH y el OD
El pH y el oxígeno disuelto pueden registrarse en tiempo real durante toda la duración del experimento mediante sensores ópticos no invasivos. Para ello, los recipientes de reacción están equipados con pequeños puntos sensores (colorante luminiscente sensible al pH y al O₂) en el fondo. La medición se realiza fluorométricamente mediante excitación con luz y medición del tiempo de decaimiento (DLR=Dual Lifetime Referencing Principle, PreSens GmbH). El intervalo de medición oscila entre 4,0 y 7,5 para el pH y entre 0 y 50 % para el oxígeno disuelto.

Recipientes de reacción (desechables)
Los recipientes de cultivo desechables equipados con puntos sensores están fabricados en poliestireno y envasados estérilmente en un juego de 2. Esto permite ahorrar tiempo y facilitar la carga del bioREACTOR. La geometría especial de los recipientes con rompedores de flujo, en combinación con los agitadores utilizados, permite mezclar muy bien los aportes medios y altos de oxígeno.

Gaseado
El suministro continuo de gas del bioREACTOR puede realizarse mediante una estación de mezcla de gases. En función de los gases utilizados (O₂, N₂, aire), son posibles tanto los cultivos aeróbicos como los anaeróbicos. Se introduce gas en el medio y los recipientes individuales se mezclan pasivamente mediante elementos de agitación magnéticos inducidos por gas y accionados por inducción. La velocidad de gaseado puede controlarse mediante la velocidad del agitador.

Monitorización del agitador
En raras ocasiones, densidades celulares muy altas o una elevada proporción de sólidos en el medio pueden hacer que fallen agitadores individuales. Esto se detecta en pocos segundos mediante sensores especiales y se activa automáticamente un reinicio de todos los agitadores. El control de la varilla agitadora garantiza así un desarrollo seguro del experimento.

Software inteligente
El software autónomo permite el funcionamiento en paralelo de varias unidades bioREACTOR 8 y/o bioREACTOR 48. Al mismo tiempo, los ensayos ya finalizados pueden compararse con los nuevos en curso.

Autoclavabilidad y esterilidad
Todas las piezas que entran en contacto con el medio son autoclavables o materiales desechables envasados estériles. El bonete de gas del bioREACTOR con los cuerpos de agitación fijos es completamente autoclavable. El bloque completo del biorreactor también puede esterilizarse con etanol. Los recipientes de cultivo desechables se envasan de forma estéril y se desechan después del experimento. Durante el experimento, la gasificación estéril del espacio de cabeza evita la contaminación cruzada y/o la contaminación extraña.

Escalabilidad
La geometría definida con precisión de los cuerpos agitadores, los parámetros de ingeniería del proceso caracterizados con precisión y la entrada de potencia y oxígeno _(kLa > 0,4 ^s-1) a través de los cuerpos agitadores magnéticos, que es comparable a la de los reactores de tanque agitado convencionales, permiten escalar fácilmente los resultados a la escala del litro.

Automatización
El bioREACTOR puede funcionar como un dispositivo de sobremesa (autónomo) o totalmente automatizado mediante su integración en un robot de pipeteado. La integración permite controlar el pH, añadir sustrato y tomar muestras de los recipientes de cultivo. Esto permite investigar estrategias de alimentación, realizar una medición de la DO (atline) o tomar muestras para experimentos posteriores.