bioREACTOR 8

Templado
La temperatura del bloque biorreactor se registra mediante un sensor Pt100 interno y puede controlarse externamente mediante un termostato. Para minimizar las pérdidas por evaporación, el espacio de cabeza de los recipientes de reacción también puede enfriarse con un condensador de reflujo. El agua evaporada se condensa y permanece así en el recipiente de cultivo. El bioREACTOR con tecnología de optosensores puede funcionar entre 10°C y 50°C. Se pueden alcanzar temperaturas de 0°C a 65°C sin necesidad de utilizar sensores.

Volumen de trabajo
El volumen de trabajo de los recipientes de cultivo oscila entre 8 y 15 mililitros. Esto permite la toma múltiple de muestras sin minimizar en gran medida el volumen de fermentación, pero también suficiente capacidad para la adición de agentes correctores del pH o sustratos.

Medición en tiempo real de pH y OD
El pH y el oxígeno disuelto pueden registrarse en tiempo real durante todo el experimento utilizando tecnología de optosensores no invasivos. Para ello, los recipientes de reacción están equipados con pequeños puntos sensores (colorante luminiscente sensible al pH y al O₂) en el fondo. La medición se realiza fluorométricamente mediante excitación con luz y medición del tiempo de decaimiento (DLR=Dual Lifetime Referencing Principle, PreSens GmbH). El intervalo de medición oscila entre 4,0 y 7,5 para el pH y entre 0 y 50 % para el oxígeno disuelto.

Recipientes de reacción (desechables)
Los recipientes de cultivo desechables equipados con puntos sensores están hechos de poliestireno y envasados estérilmente en un juego de 2. Esto permite ahorrar tiempo y facilitar la carga del bioREACTOR. La geometría especial de los recipientes con rompedores de flujo, en combinación con los agitadores utilizados, permite mezclar muy bien los aportes medios y altos de oxígeno.

Gaseado
El suministro continuo de gas del bioREACTOR puede realizarse a través de una estación de mezcla de gas. En función de los gases utilizados (O₂, N₂, aire), son posibles tanto los cultivos aeróbicos como los anaeróbicos. Se introduce gas en el medio y los recipientes individuales se mezclan pasivamente mediante elementos de agitación magnéticos inducidos por gas y accionados por inducción. La velocidad de gaseado puede controlarse mediante la velocidad del agitador.

Control de la varilla agitadora
Con densidades celulares muy altas o una elevada proporción de sólidos en el medio, puede ocurrir en raras ocasiones que fallen elementos agitadores individuales. Esto se detecta en pocos segundos mediante sensores especiales y se activa automáticamente un reinicio de todos los agitadores. El control de la varilla agitadora garantiza así un desarrollo seguro del experimento.

Software inteligente
El software autónomo permite el funcionamiento en paralelo de varias unidades bioREACTOR 8 y/o bioREACTOR 48. Al mismo tiempo, los ensayos ya finalizados pueden compararse con los nuevos en curso.

Autoclavabilidad y esterilidad
Todas las partes que entran en contacto con el medio son materiales desechables esterilizados o esterilizables en autoclave. El bonete de gas del bioREACTOR con los cuerpos de agitación fijos es completamente autoclavable. El bloque completo del biorreactor también puede esterilizarse con etanol. Los recipientes de cultivo desechables se envasan de forma estéril y se desechan después del experimento. Durante el experimento, la gasificación estéril del espacio de cabeza evita la contaminación cruzada y/o la contaminación extraña.

Escalabilidad
La geometría definida con precisión de los cuerpos de agitación, los parámetros de ingeniería de procesos caracterizados con precisión y la entrada de potencia y oxígeno (k_La > 0,4 s^-1) a través de los cuerpos de agitación magnéticos, que es comparable a la de los reactores de tanque agitado clásicos, permiten escalar fácilmente los resultados a la escala del litro.

Automatización
El bioREACTOR puede funcionar como dispositivo de sobremesa (autónomo) o totalmente automatizado mediante su integración en un robot de pipeteado. La integración permite controlar el pH, añadir sustrato y tomar muestras de los recipientes de cultivo. Esto permite investigar estrategias de alimentación, realizar una medición de la DO (atline) o tomar muestras para experimentos posteriores.